{"id":{"repo_id":"debrecen","oai_identifier":"oai:dea.lib.unideb.hu:2437/363650"},"canonical_url":"https://search.dev.ndltd.org/etd/debrecen/oai:dea.lib.unideb.hu:2437/363650","repository":{"repo_id":"debrecen","name":"University of Debrecen","base_url":"https://dea.lib.unideb.hu/server/oai/request"},"display":{"title":"Lineáris poliakrilamiddal borított kapillárisok előállítása fehérjék kapilláris zónaelektroforetikus elemzéséhez","abstract":"Munkánk során LPA-val bevont kapillárisokat készítettünk. A bevonat kialakítása három fő lépésből állt: a kvarc kapilláris felületének előkezelése (etching), a polimert tartó átmeneti, középső réteg kötése a protonált szilanol csoportokhoz (szililezés), és a szilil reagensen a polimer felső réteg kialakítása (polimerizáció). A bevonatokat ötféle módon állítottuk elő, az egyes eljárások a bevonás időtartalmában, az inkubációs időkben és az alkalmazott hőmérséklet tekintetében különböztek egymástól. Az LPA bevonatok tesztelésére egy három, meglehetősen különböző tulajdonságokkal bíró fehérje keverékoldatot (rituximab, hemoglobin, inzulin) használtunk, a CZE elválasztásához háttérelektrolitként 50 mM HCOOH (2,6 pH) alkalmaztunk. Az LPA-val bevont kapillárisok kiválóan alkalmasak fehérjék meghatározásához, a fali adszorpció kiküszöbölhető, szelektívebb, nagyobb elválasztási hatékonyságot biztosító elválasztást tesz lehetővé.","abstract_html":"Munkánk során LPA-val bevont kapillárisokat készítettünk. A bevonat kialakítása három fő lépésből állt: a kvarc kapilláris felületének előkezelése (etching), a polimert tartó átmeneti, középső réteg kötése a protonált szilanol csoportokhoz (szililezés), és a szilil reagensen a polimer felső réteg kialakítása (polimerizáció). A bevonatokat ötféle módon állítottuk elő, az egyes eljárások a bevonás időtartalmában, az inkubációs időkben és az alkalmazott hőmérséklet tekintetében különböztek egymástól. Az LPA bevonatok tesztelésére egy három, meglehetősen különböző tulajdonságokkal bíró fehérje keverékoldatot (rituximab, hemoglobin, inzulin) használtunk, a CZE elválasztásához háttérelektrolitként 50 mM HCOOH (2,6 pH) alkalmaztunk. Az LPA-val bevont kapillárisok kiválóan alkalmasak fehérjék meghatározásához, a fali adszorpció kiküszöbölhető, szelektívebb, nagyobb elválasztási hatékonyságot biztosító elválasztást tesz lehetővé.","abstract_has_math":false,"creators":["Zagyi, Bálint"],"institution":null,"degree_name":null,"degree_level":null,"degree_discipline":null,"degree_department":"DE--Természettudományi és Technológiai Kar--Kémiai Intézet","school":null,"contributors":[],"advisors":["Andrási, Melinda"],"committee_chairs":[],"committee_members":[],"year":null,"date_issued":"","date_published":null,"updated_at":"2026-07-27T19:13:53Z","subjects":["Kapilláris","Elektroforézis","Fehérje"],"languages":["hu"],"rights":[],"rights_urls":[],"identifier_entries":[]},"links":{"outbound_url":"https://hdl.handle.net/2437/363650","outbound_label":"Handle","outbound_source":"dc:identifier.uri"},"metadata_groups":[{"id":"people","label":"People","entries":[{"key":"dc:contributor.advisor","label":"Advisor","values":["Andrási, Melinda"]},{"key":"dc:contributor.department","label":"Department","values":["DE--Természettudományi és Technológiai Kar--Kémiai Intézet"]},{"key":"dc:creator","label":"Author","values":["Zagyi, Bálint"]}]},{"id":"academic_context","label":"Academic Context","entries":[{"key":"dc:date.accessioned","label":"Dc Date Accessioned","values":["2023-12-18T13:59:56Z"]},{"key":"dc:date.available","label":"Dc Date Available","values":["2023-12-18T13:59:56Z"]}]},{"id":"subjects_keywords","label":"Subjects and Keywords","entries":[{"key":"dc:subject","label":"Dc Subject","values":["Kapilláris","Elektroforézis","Fehérje"]}]},{"id":"language_rights","label":"Language and Rights","entries":[{"key":"dc:language.iso","label":"Language (ISO)","values":["hu"]}]},{"id":"identifiers","label":"Identifiers","entries":[{"key":"dc:identifier.uri","label":"Identifier URI","values":["https://hdl.handle.net/2437/363650"]}]},{"id":"additional","label":"Additional Metadata","entries":[{"key":"dc:description.abstract","label":"Abstract","values":["Munkánk során LPA-val bevont kapillárisokat készítettünk. A bevonat kialakítása három fő lépésből állt: a kvarc kapilláris felületének előkezelése (etching), a polimert tartó átmeneti, középső réteg kötése a protonált szilanol csoportokhoz (szililezés), és a szilil reagensen a polimer felső réteg kialakítása (polimerizáció). A bevonatokat ötféle módon állítottuk elő, az egyes eljárások a bevonás időtartalmában, az inkubációs időkben és az alkalmazott hőmérséklet tekintetében különböztek egymástól. Az LPA bevonatok tesztelésére egy három, meglehetősen különböző tulajdonságokkal bíró fehérje keverékoldatot (rituximab, hemoglobin, inzulin) használtunk, a CZE elválasztásához háttérelektrolitként 50 mM HCOOH (2,6 pH) alkalmaztunk. Az LPA-val bevont kapillárisok kiválóan alkalmasak fehérjék meghatározásához, a fali adszorpció kiküszöbölhető, szelektívebb, nagyobb elválasztási hatékonyságot biztosító elválasztást tesz lehetővé."]},{"key":"dc:description.degree","label":"Dc Description Degree","values":["BSc/BA"]},{"key":"dc:title","label":"Title","values":["Lineáris poliakrilamiddal borított kapillárisok előállítása fehérjék kapilláris zónaelektroforetikus elemzéséhez"]}]}],"canonical_facts":{"dc:contributor.advisor":["Andrási, Melinda"],"dc:contributor.department":["DE--Természettudományi és Technológiai Kar--Kémiai Intézet"],"dc:creator":["Zagyi, Bálint"],"dc:date.accessioned":["2023-12-18T13:59:56Z"],"dc:date.available":["2023-12-18T13:59:56Z"],"dc:description.abstract":["Munkánk során LPA-val bevont kapillárisokat készítettünk. A bevonat kialakítása három fő lépésből állt: a kvarc kapilláris felületének előkezelése (etching), a polimert tartó átmeneti, középső réteg kötése a protonált szilanol csoportokhoz (szililezés), és a szilil reagensen a polimer felső réteg kialakítása (polimerizáció). A bevonatokat ötféle módon állítottuk elő, az egyes eljárások a bevonás időtartalmában, az inkubációs időkben és az alkalmazott hőmérséklet tekintetében különböztek egymástól. Az LPA bevonatok tesztelésére egy három, meglehetősen különböző tulajdonságokkal bíró fehérje keverékoldatot (rituximab, hemoglobin, inzulin) használtunk, a CZE elválasztásához háttérelektrolitként 50 mM HCOOH (2,6 pH) alkalmaztunk. Az LPA-val bevont kapillárisok kiválóan alkalmasak fehérjék meghatározásához, a fali adszorpció kiküszöbölhető, szelektívebb, nagyobb elválasztási hatékonyságot biztosító elválasztást tesz lehetővé."],"dc:description.degree":["BSc/BA"],"dc:identifier.uri":["https://hdl.handle.net/2437/363650"],"dc:language.iso":["hu"],"dc:subject":["Kapilláris","Elektroforézis","Fehérje"],"dc:title":["Lineáris poliakrilamiddal borított kapillárisok előállítása fehérjék kapilláris zónaelektroforetikus elemzéséhez"]},"updated_at":"2026-07-27T19:13:53Z"}